Gene Circuit
Summary
Since the wet-lab has designed the circuits, it is natural for us to think of this question: how does the circuits work, or can we actually achieve the desired function in reality? And there are also many questions which we may not find it easy to answer: how does the amount of drug molecules produced and metabolized change? What will happen when we adjust the concentration of NO?
Furthermore, we also want to get to know about the logical relationship between the promoter, terminator, protein, inducer, and so on of the genetic circuits. And it is one of the most important things we concern about that whether the results obtained in the experiment consistent with those obtained in the simulation or not.
With these questions, we conducted simulation modeling for the genetic circuits. We hope to provide references for the selection of the wet-lab scheme by changes of the relative concentration of each factor in the simulated circuits, and further verify the correctness and feasibility of our circuits.
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Section3
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2018 Interlab Plate Reader ProtocolProtocols/Transformation
section4
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Fig 1. The particle standard curve obtained form the 2nd calibration experiment.
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The table template is here.
Table 1. Colony forming units per 0.1 OD600
samples | dilution factor | CFU/mL | ||
---|---|---|---|---|
8×104 | 8×105 | 8×106 | ||
1.1 | TNTC | 48 | 11 | 3.84E+07 |
1.2 | 248 | 41 | 10 | 3.28E+07 |
1.3 | 172 | 54 | 5 | 4.32E+07 |
2.1 | TNTC | 143 | 20 | 1.14E+08 |
2.2 | TNTC | 153 | 25 | 1.22E+08 |
2.3 | TNTC | 151 | 18 | 1.21E+08 |
3.1 | TNTC | 119 | 16 | 9.52E+07 |
3.2 | TNTC | 125 | 19 | 1.00E+08 |
3.3 | TNTC | 89 | 18 | 7.12E+07 |
4.1 | TNTC | 209 | 16 | 1.67E+08 |
4.2 | TNTC | 130 | 17 | 1.04E+08 |
4.3 | TNTC | 164 | 10 | 1.31E+08 |
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